بررسی تغییرات یونی و بیوشیمیایی مایع تخمدانی مولدین ماده ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius Kessler, 1877) تغذیه شده با مکمل‌های ویتامین C، آستازانتین و لسیتین سویا و اثر آن بر مدت زمان تحرک اسپرم

نوع مقاله : پژوهشی اصیل

نویسندگان
1 گروه شیلات و آبزیان دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه
2 گروه شیلات و آبزیان، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه
3 گروه شیمی تجزیه، جهاد دانشگاهی واحد آذربایجان غربی
چکیده
در تحقیق حاضر اثرات افزودنی ویتامین C، آستازانتین و لسیتین سویا بر فراسنجه­های یونی (پتاسیم، سدیم، کلسیم و منیزیم) و بیوشیمیایی (پروتئین کل، کلسترول و گلوکز) مایع تخمدانی و اثر تحریک کنندگی آن بر مدت زمان تحرک اسپرم در ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius) بررسی شد. بدین منظور 9 جیره آزمایشی مختلف: C0A0L0 (صفر میلی‌گرم بر کیلوگرم ویتامین C، صفر میلی‌گرم بر کیلوگرم آستازانتین و صفر درصد لسیتین سویا)، C300A50L0، C700A100L0، C0A50L6، C300A100L6، C700A0L6، C0A100L9، C300A0L9 و C700A50L9 ساخته شد و مولدین (05/0±51/2 کیلوگرم) به‌مدت چهار ماه تغذیه شدند. پس از حصول رسیدگی جنسی و تخم‌کشی، مایع تخمدانی برای سنجش فراسنجه­های یونی و بیوشیمیایی جدا شد. به منظور بررسی اثر تحریک کنندگی مایع تخمدانی بر تحرک اسپرم، پس از اسپرم کشی، مقدار 1 میکرولیتر از اسپرم با مایع تخمدانی ماهیان آزمایشی و آب شیرین (به عنوان تیمار شاهد) زیر میکروسکوپ مطالعه و مدت زمان تحرک اسپرم با زمان‌سنج ثبت شد. بررسی نتایج نشان داد که بیشترین مقادیر یون‌های سدیم، پتاسیم، کلسیم و منیزیم به ترتیب در ماهیان گروه C300A100L6، C300A100L6، C0A100L9 و C300A100L6 بدست آمد که با تیمار C700A50L9 اختلاف معنی‌داری داشت (p<0.05). همچنین بیشترین میزان پروتئین، کلسترول و گلوکز در تیمارهای C700A50L9، C0A50L6 و C0A100L9 مشاهده شد که با تیمار C0A0L0 اختلاف معنی‌داری داشت (p<0.05). کمترین مدت زمان تحرک اسپرم در آب شیرین (25/2±96/43 ثانیه) بدست آمد که باسایر تیمارها اختلاف معنی‌داری داشت (p<0.05)؛ به علاوه بیشترین زمان تحرک اسپرم در تیمارهای C300A100L6 و C0A100L9 (به ترتیب 03/2±76/80 و 79/1±7/80 ثانیه) مشاهده شد.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


1- Zadmajid V, Myers JN, Sørensen SR, Butts IAE. Ovarian fluid and its impacts on spermatozoa performance in fish: a review. Theriogenology. 2019 Jul 1;132:144-52.
2- Cardozo G, Pilastro A. Female nutritional condition affects ovarian fluid quality in guppies. Biology Letters. 2018 May 31;14(5):20180122.
3- Kere M, Siriboon C, Lo N-W, Nguyen NT, Ju J-C. Ascorbic acid improves the developmental competence of porcine oocytes after parthenogenetic activation and somatic cell nuclear transplantation. Journal of Reproduction and Development. 2013 Feb;59(1):78-84.
4- Tagler D, Makanji Y, Tu T, Bernabé BP, Lee R, Zhu J, et al. Promoting extracellular matrix remodeling via ascorbic acid enhances the survival of primary ovarian follicles encapsulated in alginate hydrogels. Biotechnology and Bioengineering. 2014 Jul;111(7):1417-29.
5- Valdebenito II, Gallegos PC, Effer BR. Gamete quality in fish: evaluation parameters and determining factors. Zygote. 2015 Apr;23(2):177-97.
6- Zhou C, Zhang X, Zhang Y, ShiYang X, Li Y, Shi X, et al. Vitamin C protects carboplatin-exposed oocytes from meiotic failure. Molecular Human Reproduction. 2019 Oct;25(10):601-13.
7- Lim KC, Yusoff FM, Shariff M, Kamarudin MS. Astaxanthin as feed supplement in aquatic animals. Reviews in Aquaculture. 2018 Aug;10(3):738-73.
8- Tocher DR, Bendiksen EÅ, Campbell PJ, Bell JG. The role of phospholipids in nutrition and metabolism of teleost fish. Aquaculture. 2008 Aug 1;280(1-4):21-34.
9- Izquierdo M, Fernandez-Palacios H, Tacon A. Effect of broodstock nutrition on reproductive performance of fish. Aquaculture. 2001 Jun 1;197(1-4):25-42.
10- Diogo P, Martins G, Gavaia P, Pinto W, Dias J, Cancela L, Martínez‐Páramo S. Assessment of nutritional supplementation in phospholipids on the reproductive performance of zebrafish, Danio rerio (Hamilton, 1822). Journal of Applied Ichthyology. 2015 Jun;31:3-9.
11- Jamali H, Ahmadifard N, Noori F, Gisbert E, Estevez A, Agh N. Lecithin-enriched Artemia combined with inert diet and its effects on reproduction and digestive enzymes of Aequidens rivulatus. Aquaculture. 2019 Sep 15;511:734253.
12- Niksirat H, Abdoli A. On the status of the critically endangered Caspian brown trout, Salmo trutta caspius, during recent decades in the southern Caspian Sea basin (Osteichthyes: Salmonidae). Zoology in the Middle East. 2009 Jan 1;46(1):55-60.
13- Ramsden CS, Smith TJ, Shaw BJ, Handy RD. Dietary exposure to titanium dioxide nanoparticles in rainbow trout,(Oncorhynchus mykiss): no effect on growth, but subtle biochemical disturbances in the brain. Ecotoxicology. 2009 Oct;18(7):939-51.
14- Kazemi E, Nazari S, Sourinejad I, Pourkazemi M, Paknejad H, Eslamloo K. Effect of different dietary zinc sources on seminal plasma enzymatic activity, antioxidant, and immune-related gene expression in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture International. 2021 Dec;29(6):2731-50.
15- Hatef A, Niksirat H, Alavi SMH. Composition of ovarian fluid in endangered Caspian brown trout, Salmo trutta caspius, and its effects on spermatozoa motility and fertilizing ability compared to freshwater and a saline medium. Fish Physiology and Biochemistry. 2009 Nov;35(4):695-700.
16- Roosta Z, Ghiasi S, Falahatkar B. Comparative study on hormones and biochemistry indices in plasma, ovarian fluid and oocytes of LHRHa2‐induced female Stellate sturgeon (Acipenser stellatus). Aquaculture Research. 2019 Jan;50(1):139-45.
17- Rahdari A, Gharaei A, Fadaei R, Jahantab M, Alizadeh A. Comparison of ovarian fluid, semen and blood biochemical composition of snow trout (Schizothorax zarudnyi) broods and evaluation the effect of ovarian fluid on sperm motility. 2020 Feb 20;7(3):152-64. (in Persian).
18- Johnson SL, Borziak K, Kleffmann T, Rosengrave P, Dorus S, Gemmell NJ. Ovarian fluid proteome variation associates with sperm swimming speed in an externally fertilizing fish. Journal of Evolutionary Biology. 2020 Dec 1;33(12):1783-94.
19- Dietrich MA, Arnold GJ, Nynca J, Fröhlich T, Otte K, Ciereszko A. Characterization of carp seminal plasma proteome in relation to blood plasma. Journal of proteomics. 2014;98:218-32.
20- Liu F, Shi H-z, Guo Q-s, Yu Y-b, Wang A-m, Lv F, et al. Effects of astaxanthin and emodin on the growth, stress resistance and disease resistance of yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco). Fish shellfish immunology. 2016;51:125-35.
21- Zehra S, Khan MA. Dietary vitamin C requirement of fingerling, Cirrhinus mrigala (Hamilton), based on growth, feed conversion, protein retention, hematological indices, and liver vitamin C concentration. Journal of the World Aquaculture Society. 2012;43(5):648-58.
22- Jenabi Haghparast R, Sarvi Moghanlou K, Mohseni M, Imani A. Effect of dietary soybean lecithin on fish performance, hemato-immunological parameters, lipid biochemistry, antioxidant status, digestive enzymes activity and intestinal histomorphometry of pre-spawning Caspian brown trout (Salmo trutta caspius). Fish & Shellfish Immunology. 2019 Aug 1;91:50-7.
23- Aegerter S, Jalabert B. Effects of post-ovulatory oocyte ageing and temperature on egg quality and on the occurrence of triploid fry in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. 2004 Mar 5;231(1-4):59-71.
24- Lahnsteiner F, Weismann T, Patzner R. Composition of the ovarian fluid in 4 salmonid species: Oncorhynchus mykiss, Salmo trutta f lacustris, Saivelinus alpinus and Hucho hucho. Reproduction Nutrition Development. 1995;35(5):465-74.
25- Billard R. Effects of coelomic and seminal fluids and various saline diluents on the fertilizing ability of spermatozoa in the rainbow trout, Salmo gairdneri. Reproduction. 1983 May 1;68(1):77-84.
26- Diaz R, Quinones J, Short S, Contreras P, Ulloa-Rodriguez P, Cancino-Baier D, Sepulveda N, Valdebenito I, Farias JG. Effect of exogenous lipids on cryotolerance of Atlantic salmon (Salmo salar) spermatozoa. Cryobiology. 2021 Feb 1;98:25-32.
27- Yildiz C, Yavas I, Bozkurt Y, Aksoy M. Effect of cholesterol-loaded cyclodextrin on cryosurvival and fertility of cryopreserved carp (Cyprinus carpio) sperm. Cryobiology. 2015 Apr 1;70(2):190-4.
28- Ercin U, Secer FS, Ogretmen F, Bozkurt Y. Effects of seminal plasma composition on sperm motility in mirror carp (Cyprinus carpio). Journal of Aquaculture-Bamidgeh. 2009 Jan 1;61:20570.
29- Judycka S, Słowińska M, Nynca J, Liszewska E, Dobosz S, Ciereszko A. Effects of glucose, methanol concentration, and time of equilibration on post-thaw sperm motility of rainbow trout semen. Aquaculture. 2020 Apr 15;520:734996.
30- Alavi SMH, Cosson J. Sperm motility in fishes.(II) Effects of ions and osmolality: a review. Cell Biology International. 2006 Jan;30(1):1-4.