تاثیر آب مغناطیسی شده بر شاخص‌های بیوشیمیایی خون ماهی قزل آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss)

نوع مقاله : پژوهشی اصیل

نویسندگان
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج، البرز، ایران
چکیده
در مطالعه حاضر تاثیر آب مغناطیس شده بر شاخص‌های بیوشیمیایی خون ماهیان قزل‌آلای رنگینکمان مورد بررسی قرار گرفت. تعداد 120 عدد ماهی قزل‌آلای رنگینکمان با میانگین وزن (7±150 گرم) به 12 مخازن 500 لیتری معرفی گردیدند. مگنتایزرهایی با شدت 1500، 2500 و 3500 گاوس (در 3 تکرار) در ورودی هر یک از مخازن پرورشی نصب گردید. طول دوره آزمایش 8 هفته بود و در ابتدا و انتهای دوره پرورش به منظور بررسی شاخص‌های بیوشیمیایی چون گلوکز، لیزوزیم، پروتئین کل، کورتیزول، آسپارتات آمینوترانسفراز (AST)، آلانین آمینوترانسفراز (ALT) و آلکالین فسفاتاز (ALP)خونگیری صورت گرفت. نتایج نشان داد که آب مغناطیسی شده بر پارامترهای بیوشیمیایی خون ماهی قزل‌آلای رنگینکمان به طور معنیداری اثرگذار بود. بطورکلی، افزایش مقدار مغناطیس، کاهش معنیداری بر آنزیمهای کبدی ALT)، AST، (ALP و در مورد لیزوزیم و پروتئین کل نسبت به تیمار شاهد افزایش معنیداری داشت. اثر آب مغناطیسی بر پارامترهای مرتبط با استرس از الگوی مشخصی پیروی نکرد و مقدار آن برای گلوکز و کورتیزول مربوط به تیمار 2500 که نسبت به تیمار شاهد کاهش معناداری داشت. بنابراین، استفاده از سطوح مختلف آب مغناطیسی تا سطح 2500 گاوس میتواند منجر به بهبود عملکرد برخی شاخص‌های خون ماهیان قزل‌آلای رنگینکمان شود.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


1- Carbajal-Hernandez JJ, Sanchez-Fernandez LA, Villa-Vargas JA, Carrasco- Ochoa and Martínez-Trinidad JF. Water quality assessment in shrimp culture using an analytical hierarchical process. Ecological Indicators 2013; 29:148–158.
2- Bullock TH. Electromagnetic sensing in fish. Journal of Neuroscience Research.1977;15:17–22.
3- Gabrielli C, Jaouhari R, Maurin G, Keddam M. Magnetic water treatment for scale prevention. Water Research. 2001; 35(13): 3249-3259.
4- Krzemieniewski M, Debowski M, Janczukowicz W, Pesta J. Changes of tap water and fish-pond water properties induced by magnetic treatment. Polish Journal of Natural Science. 2003;14: 459-474.
5- Lebkowska M. Effect of constant magnetic field on the biodegrade ability of organic compounds. Warsaw University of Technology Publishing House. 1991; 53 (3): 120-131.
6- Chew GL, Brown GE. Orientation of rainbow trout (Salmo gairdneri) in normal and null magnetic fields. Canadian Journal of Zoology. 1989; 67(3): 641-643.
7- Formicki K, Perkowski T. The effect of a magnetic field on the gas exchange in rainbow trout Oncorhynchus mykiss embryos (Salmonidae). Italian Journal of Zoology. 1998; 65: 475-477.
8- Formicki K, Tanski A, Sadowski M, Winnicki, A. Effects of magnetic fields on fake net performance. Journal of Applied Ichthyology. 2004; 20(5): 402-406.
9- Tanski A, Formicki K, Korzelecka-Orkisz A. Spatial orientation of fish embryos in magnetic field Electron. Journal of Ichthyology. 2005; 1: 21-34.
10- Sadowski M, Winnicki A, Formicki K, Sobocinski A, Tanski A. The effect of egg shells of salmonid fishes. Acta Ichthyologica Et Piscatoria. 2007; 37:129-135.
11- Winnicki A, Korzelecka-Orkisz A, Sobocinski A, Tanski A, Formicki K. Effects of the magnetic field on different forms of embryonic locomotor activity of northern pike, Esox lucius L. Acta Ichthyologica Et Piscatoria. 2004; 34(2):193-203.
12- Formicki K, Bonisławska M. Jasinski M. Spatial orientation of trout (Salmo trutta L.) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walb.) embryos in natural and artificial magnetic field. Acta Ichthyologica Et Piscatoria. 1997; 27;29–40.
13- Hossain MS, Koshio S, Ishikawa M, Yokoyama S, Sony NM. Dietary supplementation of uridine monophosphate enhances growth, hematological profile, immune functions and stress tolerance of juvenile red sea bream, Pagrus major. Aquaculture.2017;475: 29-39.
14- Flynn SR, Matsuka M, Martin robchaud DJ, Benfey TJ.Gynojenesisin shortnose starjeon ,Acipenser brevirostrum Lesuere. Aquaculter. 2006; 253:721-727.
15- Krzemieniewski M, Dobrzynska A, Janczukowicz W, Pesta J, Zielinski M. Influence of constant magnetic field on intensity of hydroxyl radicals generation in Fenton's reaction. Chemist, 2002; 1:12-15.
16- Ghobadi Sh, Matinfar A, Nezami ShA. Soltani M. Influence of supplementary enzymes Avizyme on fish meal replacement by soybean meal and its effects on growth performance and survival rate of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Fisheries 2009; 3(2): 11-22. (In Persian).
17- Harikrishnan R, Kim J, Balasundaram C, Heo M. Immunomodulatory effects of chitin and chitosan enriched diets in Epinephelus bruneus against Vibrio alginolyticus infection. Aquaculture 2012; 326:46- 52.
18- Ellis AE. Lysozyme assay. Techniques in Fish Immunology. SOS Publication, Fair Haven, New Jersey. 1990; 101-103.
19- Bani A, Haghi-Vayghn A. Temporal variations in haematological and biochemical idoicess of the Caspian Kutum. Rutilus frisii kutum. Ichthyology Research. 2011; 58:126-133.
20- Xie J, Liu B, Zhou Q, Su Y, He Y, Pan L, Ge X, Xu P. Effects of anthraquinone extract from rhubarb Rheum officinale Bail on the crowding stress response and growth of common carp Cyprinus carpio var. Jian. Aquaculture. 2008; 281:5-11.
21- Hassan SM, Sulaimman MA. Abdul Rahan R, Kamaruddin R. Effects of long term and continuous magnetic field exposure on the water properties, growth performance, Plasma biochemistry and body composition of Tilapia in a recirculating aquaculture system. Aquacultural Engineering. 2018; 1-22.
22- Liu F, Shi H, Guo Q, Yu Y, Wang A, Lv F, Shen W. Effects of astaxanthin and emodin on the growth, stress resistance and disease resistance of yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco). Fish and Shellfish Immunology. 2016; 51:125-135.
23- Svetina A, Matasin Z, Tofant A, Vucemilo M, Fijan N. Haematology and some blood chemical parameters of young carp till the age of three years. Acta Veterinaria Hungarica, 2002; 50: 459-467.
24- Sano T. Haematological studies of the culture fishes in Japan 3. Changes in blood constituents with growth of Rainbow trout. Journal of the Tokyo University of Fisheries. 1960; 46:78-87.
25- Swain P, Nayak SK. Role of maternally derived immunity in fish. Fish and Shellfish Immunology. 2009;27: 89-99.
26- Kim SG, Kang JC. Effect of dietary copper exposure on accumulation, growth and hematological parameters of the juvenile rockfish, Sebastes schlegeli. Mar. Environment Research. 2004;58: 65- 82.
27- Datta S, Saha DR, Ghosh D, Majumdar T, Bhattacharya S, Mazumder S. Sub-lethal concentration of arsenic interferes with the proliferation of hepatocytes and induces in vivo apoptosis in Clarias batrachus L. Comparative Biochemistry and Physiology;C. 2007; 36(4):538-545.
28- Hu Y, Huang Y, Zhong L, Xiao TY, Wen H, Huan ZL, Mao XW, Li JL. Effects of ammonia stress on the gill Na+/K+-ATPase, microstructure and some serum physiological-biochemical indices of juvenile black carp (Mylopharyngodon piceus). Journal of Fishery Sciences of China. 2012. 132: 330-321.