علوم و فنون شیلات

علوم و فنون شیلات

اثر سطوح مختلف اسید آراشیدونیک جیره بر میزان کلسیم، هورمون‌های تیروئیدی و کورتیزول در مراحل زرده‌سازی و رسیدگی نهایی مولدین ماده‌ماهی گورامی آبی (Trichopodus trichopterus, Pallas, 1770)

نویسندگان
1 گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی و منابع طبیعی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، مازندران، ایران
2 گروه علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، مازندران، ایران
3 گروه بیولوژی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه گلف، انتاریو، کانادا
چکیده
اهداف: اسید آراشیدونیک از اسیدهای چرب ضروری بوده که نقش مهمی در فرآیند تولیدمثل ماهیان از طریق تنظیم عملکرد سیستم درون‌ریز از جمله سنتز هورمون‌های استروئیدی دارد. هدف این مطالعه بررسی اثر سطوح مختلف اسید آراشیدونیک جیره بر میزان کلسیم، هورمون‌های تیروئیدی و کورتیزول در مراحل زرده‌سازی و رسیدگی نهایی مولدین ماده‌ماهی گورامی آبی بود.

مواد و روش‌ها: در این تحقیق کاربردی تعداد ۱۵۰ قطعه بچه ماهی گورامی آبی (Trichopodus trichopterus) در میان ۱۵ آکواریوم (۳ آکواریوم در هر تیمار) توزیع و تا رسیدن به بلوغ جنسی به مدت ۵ ماه از جیره‌های آزمایشی شامل سطوح مختلف اسید آراشیدونیک (۰/۰۲، ۰/۵۳، ۱/۰۵، ۱/۶، ۲/۱۲% از جیره) تغذیه کردند. پس از رسیدگی جنسی تعداد ۱۲ ماهی ماده از هر تیمار انتخاب و میزان یون کلسیم در پلاسما با روش فتومتری و میزان هورمون کورتیزول در ‌سرم و میزان هورمون‌های تری‌یدوتیرونین (T۳) و تیروکسین (T۴) ذخیره‌شده در تخمدان با روش الایزا در دو مرحله زرده‌سازی و رسیدگی نهایی اندازه‌گیری شدند. تمامی داده‌ها پس از تست نرمال‌بودن با آزمون کولموگروف- اسمیرنوف با استفاده از آنالیز واریانس یک‌طرفه تجزیه و تحلیل شده و برای مقایسه معنی‌داری بین میانگین‌ها از آزمون آماری دانکن در سطح احتمال ۵% استفاده شد. برای محاسبه ارتباط میان سطوح آراشیدونیک جیره و پارامترهای سنجیده‌شده از ضریب همبستگی پیرسون استفاده شد. کلیه آنالیزها توسط نرم‌افزار SPSS (نسخه ۲۲) انجام شد.

یافته‌ها: در مرحله زرده‌سازی در تیمارهای با سطوح بالای آراشیدونیک میزان یون کلسیم بالاترین مقادیر و هورمون کورتیزول کمترین سطح را داشتند (۰/۰۵p<). میزان هورمون کورتیزول در مرحله رسیدگی نهایی نسبت به مرحله زرده‌سازی بالاتر بوده و همچنین با افزایش سطوح آراشیدونیک روند افزایشی داشت. میزان هورمون T۳ در تخمدان ماهیان در هر دو مرحله زرده‌سازی و رسیدگی نهایی با افزایش سطوح ARA افزایش معنی‌داری داشت (۰/۰۵p<). میزان هورمون T۴ در تخمدان ماهیان در مرحله زرده‌سازی با افزایش سطح ARA ارتباط معنی‌داری نداشت، در حالی که در مرحله رسیدگی نهایی با افزایش ARA جیره میزان ذخیره این هورمون به طور معنی‌داری افزایش یافت(۰/۰۵p<).

نتیجه‌گیری: استفاده از سطوح بالای آراشیدونیک در مرحله مولدسازی می‌تواند باعث افزایش سطح کلسیم و هورمون‌های تیروئیدی و درنتیجه بهبود زرده‌سازی شود. در مرحله رسیدگی نهایی نیز افزایش آراشیدونیک تا سطح ۱/۶% باعث افزایش سطح کورتیزول می‌شود.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


S Izquierdo M, Ferna׳ndez-Palacios H, J Tacon AG. Effect of broodstock nutrition on reproductive performance of fish. Aquaculture. 2001;197(1-4):25-42. [Link] [DOI:10.1016/S0044-8486(01)00581-6]
Norambuena F, Estévez A, Ma-anós E, Gordon Bell J, Carazo I, Duncan N. Effects of graded levels of arachidonic acid on the reproductive physiology of senegalese sole (Solea senegalensis): Fatty acid composition, prostaglandins and steroid levels in the blood of broodstock bred in Captivity. Gen Comp Endocrinol. 2013;191:92-101. [Link] [DOI:10.1016/j.ygcen.2013.06.006]
Furuita H, Hori K, Suzuki, Sugita T, Yamamoto T. Effect of n-3 and n-6 fatty acids in broodstock diet on reproduction and fatty acid composition of broodstock and eggs in the Japanese eel Anguilla japonica. Aquaculture. 2007;267(1-4):55-61. [Link] [DOI:10.1016/j.aquaculture.2007.01.039]
Mercure F, Van Der Kraak G. Mechanisms of Action of Free Arachidonic acid on ovarian steroid production in the Goldfish. Gen Comp Endocrinol. 1996;102(1):130-40. [Link] [DOI:10.1006/gcen.1996.0054]
Norberg B, Kleppe L, Andersson E, Thorsen A, Rosenlund G, Hamre K. Effects of dietary arachidonic acid on the reproductive physiology of female Atlantic cod (Gadus morhua L.). Gen Comp Endocrinol. 2017;250:21-35. [Link] [DOI:10.1016/j.ygcen.2017.05.020]
Michael AE, Pester LA, Curtis P, Shaw RW, Edwards CRW, Cooke BA. Direct inhibition of ovarian steroidogenesis by Cortisol and the modulatory role of 11β-hydroxysteroid dehydrogenase. Clin Endocrinol. 1993;38(6):641-4. [Link] [DOI:10.1111/j.1365-2265.1993.tb02147.x]
Lund I, Steenfeldt SJ. The Effects of dietary long-chain essential fatty acids on growth and stress tolerance in pikeperch larvae (Sander lucioperca L.). Aquac Nutr. 2011;17(2):191-9. [Link] [DOI:10.1111/j.1365-2095.2009.00724.x]
Martins DA, Rocha F, Castanheira F, Mendes A, Pousão-Ferreira P, Bandarra N, et al. Effects of dietary arachidonic acid on cortisol production and gene expression in stress response in Senegalese sole (Solea senegalensis) post-larvae. Fish Physiol Biochem. 2013;39(5):1223-38. [Link] [DOI:10.1007/s10695-013-9778-6]
Milla S, Wang N, Mandiki SN, Kestemont P. Corticosteroids: Friends or foes of teleostfish reproduction? Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. 2009;153(3):242-51. [Link] [DOI:10.1016/j.cbpa.2009.02.027]
Nangalama AW, Moberg GP. Interaction between cortisol and arachidonic acid on the secretion of lh from ovine pituitary tissue. J Endocrinol. 1991;131(1):87-94. [Link] [DOI:10.1677/joe.0.1310087]
Chang JP, Graeter J, Catt KJ. Dynamic actions of arachidonic acid and protein kinase C in pituitary stimulation by gonadotropin-releasing hormone. Endocrinology. 1987;120(5):1837-45. [Link] [DOI:10.1210/endo-120-5-1837]
Nelson ER, Habibi HR. Thyroid receptor subtypes: Structure and function in fish. Gen Comp Endocrinol. 2009;161(1):90-6. [Link] [DOI:10.1016/j.ygcen.2008.09.006]
Raine JC, Leatherland JF. Morphological and functional development of the thyroid tissue in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) embryos. Cell Tissue Res. 2000;301(2):235-44. [Link] [DOI:10.1007/s004410000237]
Radke WJ, Albasi CM, Harvey S. Haemorrhage and adrenocortical activity in the fowl (Gallus domesticus). Gen Comp Endocrinol. 1985;60(2):204-9. [Link] [DOI:10.1016/0016-6480(85)90315-6]
Biswas A, Kundu S, Roy S, De J, Pramanik M, Ray AK. Thyroid hormone profile during annual reproductive cycle of diploid and triploid catfish, Heteropneustes fossilis (Bloch). Gen Comp Endocrinol 2006;147(2):126-32. [Link] [DOI:10.1016/j.ygcen.2005.12.012]
Degani G. Oogenesis control in multispawning blue gourami (Trichogaster trichopterus) as a model for the Anabantidae family. Int J Sci Res. 2016;5(7):16-21. [Link]
Degani G. Reproduction control in multi-spawning asynchronic Trichogaster trichopterus (Pallas) as a model for the anabantidae family. Trends Comp Biochem Physiol. 1993;1:1269-75. [Link]
Masoudi Asil Sh, Abedian Kenari AM, Rahimi Miyanji G, Van Der Kraak G. The influence of dietary arachidonic acid on growth, reproductive performance, and fatty acid composition of ovary, egg and larvae in an anabantid model fish, Blue gourami (Trichopodus trichopterus, Pallas, 1770). Aquaculture. 2017;476:8-18. [Link] [DOI:10.1016/j.aquaculture.2017.03.048]
Folch J, Lees M, Sloane Stanley GH. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. J Biol Chem. 1957;226(1):497-509. [Link]
Mommsen TP, Walsh PJ. 5 Vitellogenesis and Oocyte assembly. Fish Physiol. 1988;11(Part A):347-406. [Link]
Røjbek MC, Støttrup JG, Jacobsen C, Tomkiewicz J, Nielsen A, Trippel EA. Effects of dietary fatty acids on production and quality of eggs and larvae of Atlantic cod (Gadus morhua L.). Aquac Nutr. 2014;20(6):654-66. [Link] [DOI:10.1111/anu.12124]
Meves H. Arachidonic acid and ion channels: An update. Br J Pharmacol. 2008;155(1):4-16. [Link] [DOI:10.1038/bjp.2008.216]
Muslikhov ER, Sukhanova IF, Avdonin PV. Arachidonic acid activates release of calcium ions from reticulum via ryanodine receptor channels in C2C12 skeletal myotubes. Biochemistry (Mosc). 2014;79(5):435-9. [Link] [DOI:10.1134/S0006297914050071]
Westring CG, Ando H, Kitahashi T, Bhandari RK, Ueda H, Urano A, et al. Seasonal changes in CRF-I and urotensin i transcript levels in masu salmon: Correlation with cortisol secretion during spawning. Gen Comp Endocrinol. 2008;155(1):126-40. [Link] [DOI:10.1016/j.ygcen.2007.03.013]
Cleary JJ, Pankhurst NW, Battaglene SC. The effect of capture and handling stress on plasma steroid levels and gonadal condition in wild and farmed snapper Pagrus auratus (Sparidae). J World Aquac Soc. 2000;31(4):558-69. [Link] [DOI:10.1111/j.1749-7345.2000.tb00905.x]
Lethimonier C, Flouriot G, Valotaire Y, Kah O, Ducouret B. Transcriptional interference between glucocorticoid receptor and estradiol receptor mediates the inhibitory effect of cortisol on fish vitellogenesis. Biol Reprod. 2000;62(6):1763-71. [Link] [DOI:10.1095/biolreprod62.6.1763]
Kime DE, Dolben IP. Hormonal changes during induces ovulation of the carp Cyprinus carpio. Gen Comp Endocrinol. 1985;58(1):137-49. [Link] [DOI:10.1016/0016-6480(85)90147-9]
Eales JG, Brown, SB. Measurement and regulation of thyroidal status in teleost fish. Rev Fish Biol Fish. 1993;3(4):299-347. [Link] [DOI:10.1007/BF00043383]
Lachowicz K, Koszela-Piotrowska I, Rosołowska-Huszcz D. Thyroid hormone metabolism may depend on dietary fat. J Anim Feed Sci, 2008;17(1):110-9. [Link] [DOI:10.22358/jafs/66475/2008]
Forman BM, Tontonoz P, Chen J, Brun RP, Spiegelman BM, Evans RM. 15-Deoxy-Δ12, 14-Prostaglandin J2 is a ligand for the adipocyte determination factor PPARγ. Cell. 1995;83(5):803-12. [Link] [DOI:10.1016/0092-8674(95)90193-0]
Kasai K, Banba N, Hishinuma A, Matsumura M, Kakishita H, Matsumura M et al. 15-Deoxy-Δ12,14-prostaglandin J2facilitates thyroglobulin production by cultured human thyrocytes. Am J Physiol Cell Physiol. 2000;279(6):C1859-69. [Link] [DOI:10.1152/ajpcell.2000.279.6.C1859]