علوم و فنون شیلات

علوم و فنون شیلات

تعیین میزان غلظت کشندگی میانی (LC50) دی‌ان- بوتیل‌فتالات (DnBP) در بچه‌ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss)

نوع مقاله : پژوهشی اصیل

نویسندگان
1 گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
2 گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
چکیده
اهداف: هدف از این مطالعه تعیین غلظت کشنده میانی (LC۵۰) در مدت ۹۶ساعت و برآورد میزان حداقل غلظت موثر (LOEC) و بالاترین غلظت بدون تاثیر (NOEC) آلاینده دی‌ان- بوتیل‌فتالات (DnBP) روی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss) بود.

مواد و روش‌ها: آزمایش روش سمیت حاد به روش ساکن و براساس رهنمود استاندارد O.E.C.D به‌مدت ۹۶ساعت روی بچه‌ماهیان قزل‌آلای رنگین‌کمان (با میانگین وزن ۱/۲۵±۷/۳گرم) انجام شد. محاسبات آماری با نرم‌افزار SPSS ۲۱ و روش رگرسیون پروبیت و ANOVA صورت گرفت.

یافته‌ها: طی زمان ۲۴ الی ۹۶ساعت با افزایش غلظت دی‌ان- بوتیل‌فتالات مرگ بچه‌ماهیان قزل‌آلای رنگین‌کمان افزایش یافت. میزان غلظت کشنده میانی در زمان‌های ۲۴، ۴۸، ۷۲ و ۹۶ساعت به‌ترتیب ۱۵/۴۶، ۱۲/۹۶، ۱۱/۲۱ و ۹/۹۳میلی‌گرم در لیتر بود. همچنین میزان حداقل غلظت موثر در مدت‌زمان‌های ۲۴، ۴۸، ۷۲ و ۹۶ساعت به‌ترتیب ۳/۴، ۳/۸، ۷/۲ و ۹/۹۵میلی‌گرم در لیتر بود. بالاترین غلظت بدون تاثیر این آلاینده در زمان‌های ۲۴، ۴۸، ۷۲ و ۹۶ساعت به‌ترتیب ۰/۷۸، ۰/۹۵، ۱/۴۵ و ۱/۶۸میلی‌گرم در لیتر بود.

نتیجه‌گیری: مطالعات سم‌شناسی روی قزل‌آلای رنگین‌کمان به‌علت اهمیت آنها ضروری است و نتایج این پژوهش می‌تواند در ارزیابی خطرات بوم‌شناختی و غذایی این گروه از آلاینده‌ها کاربردی باشد. با توجه به غلظت کشندگی میانی DnBP (۹/۹۳میلی‌گرم در لیتر) که جزو آلاینده‌های با سمیت متوسط قرار دارد، توصیه می‌شود راهکار مناسب برای کنترل ورود DnBP به بوم‌سازگان‌های آبی ضروری است.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


Clark RB, Frid C, Attrill M. Marine pollution. Oxford UK: Oxford University Press; 2001. [Link]
Costa J, Ferreira M, Rey-Salgueiro L, Reis-Henriques MA. Comparision of the waterborne and dietary routes of exposure on the effects of Benzo(a)pyrene on biotransformation pathways in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Chemosphere. 2011;84(10):1452-60. [Link] [DOI:10.1016/j.chemosphere.2011.04.046]
Embry MR, Belanger SE, Braunbeck TA, Galay-Burgos M, Halder M, Hinton DE, et al. The fish embryo toxicity test as an animal alternative method in hazard and risk assessment and scientific research. Aquat Toxicol. 2010;97(2):79-87. [Link] [DOI:10.1016/j.aquatox.2009.12.008]
Moore NP. The oestrogenic potential of the phthalate esters. Reprod Toxicol. 2000;14(3):183-92. [Link] [DOI:10.1016/S0890-6238(00)00068-X]
Heudorf U, Mersch-Sundermann V, Angerer J. Phthalates: Toxicology and exposure. Int J Hyg Environ Health. 2007;210(5):623-34. [Link] [DOI:10.1016/j.ijheh.2007.07.011]
Wenzl T. Methods for the determination of phthalates in food [Internet]. Belgium: JRC European Commission; 2009 [cited 2018 Aug 12]. Available from: https://www.bezpecnostpotravin.cz/UserFiles/File/Publikace/ftalaty.pdf [Link]
Uren-Webster TM, Lewis C, Filby AL, Paull GC, Santos EM. Mechanisms of toxicity of di(2-ethylhexyl) phthalate on the reproductive health of male zebrafish. Aquat Toxicol. 2010;99(3):360-9. [Link] [DOI:10.1016/j.aquatox.2010.05.015]
Staples CA, Peterson DR, Parkerton TF, Adams WJ. The environmental fate of phthalate esters: A literature review. Chemosphere. 1997;35(4):667-749. [Link] [DOI:10.1016/S0045-6535(97)00195-1]
Magdouli S, Daghrir R, Brar SK, Drogui P, Tyagi RD. Di 2-ethylhexylphtalate in the aquatic and terrestrial environment: A critical review. J Environ Manage. 2013;127:36-49. [Link] [DOI:10.1016/j.jenvman.2013.04.013]
Bradlee CA, Thomas P. Aquatic toxicity of phthalate esters. In: Staples CA, editor. Series anthropogenic compounds, the handbook of environmental chemistry. 3Q Volume. Berlin/Heidelberg: Springer; 2003. pp. 263-98. [Link] [DOI:10.1007/b11469]
Evans DH, Claiborne JB, editors. The physiology of fishes. Boca Raton: CRC Press; 2005. p. 601. [Link]
Fakharzadeh SME, Farhangi M, Mojazi Amiri B, Ahmadi M, Mazloumi N. The effect of hydrocortisone treatment by bathing and daphnia enrichment on the salinity stress in Persian sturgeon Acipenser persicus juvenile. Int Aquat Res. 2011;3:125-33. [Link]
Hakim Y, Ali HA. Evaluation of the toxic effects of phtalate, Di-n-Butule Phthalate (DBP) on health of Oreochromis niloticus. World J Fish Marine Sci. 2014. [Link]
Boran M, Altinok ‹L, Çapkin E, Karaçam H, B‹çer V. Acute toxicity of carbaryl, methiocarb, and carbosulfan to the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and guppy (Poecilia reticulata). Turk J Vet Anim Sci. 2007;31(1):39-45. [Link]
Fisheries Statistical Yearbook. Ministry of Agriculture-Jahad [Internet]. Tehran: Iran Fisheries Organization; 2016 [cited 2018 Aug 12]. Available from: https://bit.ly/2XWMgNq [Persian] [Link]
Shyong WJ, Chen HC. Acute toxicity of copper, cadmium, and mercury to the freshwater fish Varicorhinus barbatus and Zacco barbata. Acta Zoologica Taiwanica. 2000;11(1):33-45. [Link]
Di Giulio RT, Hinton DE, editors. The toxicology of fishes. Boca Raton: CRC Press; 2008. pp. 319-884. [Link] [DOI:10.1201/9780203647295]
Banaee M, Mirvagefei AR, Rafei GR, Majazi Amiri B. Effect of sub-lethal diazinon concentrations on blood plasma biochemistry. Int J Environ Res. 2008;2(2):189-98. [Link]
Inyang I, Daka E, Ogamba E. Changes in electrolyte activities of Clarias gariepinus exposed to diazinon. Biol Environ Sci J Trop. 2010;198-200. [Link]
Organization for Economic Co-Operation and Development. Section 2-Effects on biotic systems, OECD guidelines for thetesting of chemicals. Paris: OECD; 1984. [Link]
Milne I, Seager J, Mallett M, Sims I. Effects of short‐term pulsed ammonia exposure on fish. Environ Toxicol Chem. 2000;19(12):2929-36. [Link] [DOI:10.1002/etc.5620191213]
Rice EW, Baird RB, Eaton AD. Standard methods for the examination of water and wastewater, 23rd edition. Unknown city: American Public Health Association, American Water Works Association; 2017. [Link]
Louis AH, Diana LW, Patricia H, Elizabeth RS. Pesticides and aquatic animals: A Guide to Reducing Impacts on Aquatic Systems [Internet]. Virginia: Virginia Cooperation Extension, Virginia State University; 1996 [cited 2018 Aug 25]. Available from: https://www.pubs.ext.vt.edu/420/420-013/420-013.html. [Link]
Urien N, Uher E, Billoir E, Geffard O, Fechner LC, Lebrun JD. A biodynamic model predicting waterborne lead bioaccumulation in Gammarus pulex: Influence of water chemistry and in situ validation. Environ Pollut. 2015;203:22-30. [Link] [DOI:10.1016/j.envpol.2015.03.045]
Bang DY, Lee IK, Lee BM. Toxicological characterization of phthalic acid. Toxicol Res. 2011;27(4):191-203. [Link] [DOI:10.5487/TR.2011.27.4.191]
Mahood IK, Scott HM, Brown R, Hallmark N, Walker M, Sharpe RM. In utero exposure to di(n-butyl) phthalate and testicular dysgenesis: Comparison of fetal and adult end points and their dose sensitivity. Environ Health Perspect. 2007;115 Suppl 1:55-61. [Link] [DOI:10.1289/ehp.9366]
Abel PD, Axiak V. Ecotoxicology and the marine environment. Cambridge: Cambridge University Press; 1991. [Link]
Abu Zeid EH, Khalil ASA. Toxicological consequences of Di-n-Butyl-Phthalate (DBP) on health of Nile tilapia fingerlings. Am J Anim Vet Sci. 2014;9(4):269-76. [Link] [DOI:10.3844/ajavsp.2014.269.276]
Sharifpour I, Soltani M, Javadi M. Determination of lethal onccentration (LC50) Endosulfan and its damage in Huso huso. J Sci Fish Iran. 2003;12(4):69-84. [Persian] [Link]