علوم و فنون شیلات

علوم و فنون شیلات

اثرات متقابل آسکوربیک‌اسید و تراکم بر عملکرد تولیدمثلی قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss)

نوع مقاله : پژوهشی اصیل

نویسندگان
1 گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه‌سرا، گیلان، ایران
2 گروه شیلات، پژوهشکده تالاب بین‌المللی هامون، دانشگاه زابل، زابل، سیستان و بلوچستان، ایران
چکیده
مطالعه حاضر با هدف بررسی اثرات متقابل آسکوربیک‌اسید و تراکم بر عملکرد تولیدمثلی و میزان هورمون‌های جنسی ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان انجام شد. در این راستا، شش تیمار شامل سه جیره غذایی حاوی مقادیر صفر، ۱۰۰ و ۱۰۰۰میلی‌گرم آسکوربیک‌اسید از نوع ال- آسکوربیل- ۲- پلی‌فسفات در هر کیلوگرم غذا در تقابل با دو تراکم ۴/۳۳کیلوگرم بر متر مکعب و ۲/۱۶کیلوگرم بر متر مکعب در سه تکرار و به مدت ۱۶ هفته به‌منظور پرورش مولدین در نظر گرفته شدند. تعداد ۸۱ عدد مولد ماده با وزن متوسط ۱/۵±۸۱۲گرم به حوضچه‌های پرورش (حجم ۹۱۰لیتر) معرفی شدند. در پایان هفته ۱۶ و هنگام آمادگی ماهی‌ها برای تخم‌ریزی، از هر تکرار تراکم‌های بالا و پایین به ترتیب ۴ و ۲ مولد پس از خون‌گیری ماهی‌ها برای سنجش غلظت هورمون‌های جنسی پروژسترون، تستوسترون و استرادیول تخم‌کشی شدند. سپس پارامترهای مربوط به تولیدمثل شامل هماوری‌کاری، تعداد تخمک در هر گرم و قطر تخمک اندازه‌گیری و سپس لقاح انجام شد. طی دوره انکوباسیون، درصد لقاح و تلفات ثبت شد. نتایج حاصل حاکی از وجود اثر متقابل بین آسکوربیک‌اسید و تراکم و همچنین معنی‌داربودن این اثر در پارامترهای تولیدمثلی (تعداد در گرم تخمک، قطر تخمک، هماوری‌کاری و درصد لقاح) بود (۰/۰۵p<). در خصوص هورمون‌های جنسی، تاثیر تیمارها بر مقدار هر سه هورمون و اثر متقابل آنها بر مقدار هورمون‌های استرادیول و تستوسترون معنی‌دار (۰/۰۵p<)، ولی اثر متقابل تراکم و جیره بر مقدار پروژسترون معنی‌دار نبود (۰/۰۵p>). نتایج این مطالعه استفاده از مقادیر بالاتر آسکوربیک‌اسید در مولدین در مقایسه با دوران پرواری و همچنین نقش مثبت این ویتامین را در شاخص‌های تولیدمثلی تایید می‌کند.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


Jansen M, McLeary R. Characteristics of current international trade of live salmonid eggs. Revue Scientifique et Technique. 1996;15(2):423-33. [Link] [DOI:10.20506/rst.15.2.930]
Izquierdo MS, Fernández-Palacios H, Tacon AG. Effect of broodstock nutrition on reproductive performance of fish. Aquaculture. 2001;197(1-4):25-42. [Link] [DOI:10.1016/S0044-8486(01)00581-6]
Li MH, Robinson EH. Dietary ascorbic acid requirement for growth and health in fish. J Appl Aquac. 1999;9(2):53-80. [Link] [DOI:10.1300/J028v09n02_04]
Sandnes K, Ulgenes Y, Braekkan OR, Utne F. The effect of ascorbic acid supplementation in broodstock feed on reproduction of rainbow trout (Salmo gairdneri). Aquaculture. 1984;43(1-3):167-77. [Link] [DOI:10.1016/0044-8486(84)90019-X]
Dabrowski K, Ciereszko A. Proteinase inhibitor (s) in seminal plasma of teleost fish. J Fish Biol. 1994;45(5):801-9. [Link] [DOI:10.1111/j.1095-8649.1994.tb00945.x]
Ai Q, Mai K, Tan B, Xu W, Zhang W, Ma H, et al. Effects of dietary vitamin C on survival, growth, and immunity of large yellow croaker, Pseudosciaena crocea. Aquaculture. 2006;261(1):327-36. [Link] [DOI:10.1016/j.aquaculture.2006.07.027]
Lin MF, Shiau SY. Requirements of vitamin C (L‐ascorbyl‐2‐monophosphate‐Mg and L‐ascorbyl‐2‐monophosphate‐Na) and its effects on immune responses of grouper, Epinephelus malabaricus. Aquac Nutr. 2004;10(5):327-33. [Link] [DOI:10.1111/j.1365-2095.2004.00307.x]
Zhou Q, Wang L, Wang H, Xie F, Wang T. Effect of dietary vitamin C on the growth performance and innate immunity of juvenile cobia (Rachycentron canadum). Fish Shellfish Immunol. 2012;32(6):969-75. [Link] [DOI:10.1016/j.fsi.2012.01.024]
Chen YJ, Yuan RM, Liu YJ, Yang HJ, Liang GY, Tian LX. Dietary vitamin C requirement and its effects on tissue antioxidant capacity of juvenile largemouth bass, Micropterus salmoides. Aquaculture. 2015;435:431-6. [Link] [DOI:10.1016/j.aquaculture.2014.10.013]
Chen R, Lochmann R, Goodwin A, Praveen K, Dabrowski K, Lee KJ. Alternative complement activity and resistance to heat stress in golden shiners (Notemigonus crysoleucas) are increased by dietary vitamin C levels in excess of requirements for prevention of deficiency signs. J Nutr. 2003;133(7):2281-6. [Link] [DOI:10.1093/jn/133.7.2281]
Schreck CB, Contreras-Sánchez WM, Fitzpatrick MS, Effects of stress on fish reproduction gamete quality and progeny. Aquaculture. 2001;197(1):3-24. [Link] [DOI:10.1016/S0044-8486(01)00580-4]
Holm JC, Refstie T, Bø S. The effect of fish density and feeding regimes on individual growth rate and mortality in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. 1990;89(3-4):225-32. [Link] [DOI:10.1016/0044-8486(90)90128-A]
Brown GE, Brown JA, Srivastava RK. The effect of stocking density on the behaviour of Arctic charr (Salvelinus alpinus L.). J Fish Biol. 1992;41(6):955-63. [Link] [DOI:10.1111/j.1095-8649.1992.tb02722.x]
Shahkar E, Yun H, Kim DJ, Kim SK, Lee BI, Bai SC. Effects of dietary vitamin C levels on tissue ascorbic acid concentration, hematology, non-specific immune response and gonad histology in broodstock Japanese eel, Anguilla japonica. Aquaculture. 2015;438:115-21. [Link] [DOI:10.1016/j.aquaculture.2015.01.001]
AOAC. Official methods of analysis of AOAC international. 17th Edition. Rockville: AOAC International; 2002. [Link]
Mehrabi Y. A preliminary study on the anesthetic effect of clove flower in rainbow trout. PAJOUHESH & SAZANDEGI. 2000;(40-2):160-2. [Persian]. [Link]
Bromage N, Jones J, Randall C, Thrush M, Davies B, Springate J, et al. Broodstock management, fecundity, egg quality and the timing of egg production in the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. 1992;100(1-3):141-66. [Link] [DOI:10.1016/0044-8486(92)90355-O]
Abdollahi H, Seyedi Ghomi M, Mehrabi K. Rainbow trout reproduction. Tehran: Naghshe-e Bayan; 2004. [Persian] [Link]
Blom JH, Dabrowski K. Reproductive success of female rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in response to graded dietary ascorbyl monophosphate levels. Biol Reprod. 1995;52(5):1073-80. [Link] [DOI:10.1095/biolreprod52.5.1073]
Dabrowski K, Blom JH. Ascorbic acid deposition in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) eggs and survival of embryos. Comp Biochem Physiol Part A Physiol. 1994;108(1):129-35. [Link] [DOI:10.1016/0300-9629(94)90064-7]
Dabrowski K, Ciereszko RE, Blom JH, Ottobre JS. Relationship between vitamin C and plasma concentrations of testosterone in female rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Fish Physiol Biochem. 1995;14(5):409-14. [Link] [DOI:10.1007/BF00003378]
Blom JH, Dabrowski K. Dietary ascorbyl phosphate results in high ascorbic acid content in eggs of rainbow trout. Comp Biochem Physiol Part A Physiol. 1995;112(1):75-9. [Link] [DOI:10.1016/0300-9629(95)00087-N]
Sobhana KS, Mohan CV, Shankar KM. Effect of dietary vitamin C on the disease susceptibility and inflammatory response of mrigal, Cirrhinus mrigala (Hamilton) to experimental infection of Aeromonas hydrophila. Aquaculture. 2002;207(3-4):225-38. [Link] [DOI:10.1016/S0044-8486(01)00793-1]
Ortuño J, Esteban MA, Meseguer J. The effect of dietary intake of vitamins C and E on the stress response of gilthead seabream (Sparus aurata L.). Fish Shellfish Immunol. 2003;14(2):145-56. [Link] [DOI:10.1006/fsim.2002.0428]
Chen R, Lochmann R, Goodwin A, Praveen K, Dabrowski K, Lee KJ. Effects of dietary vitamins C and E on alternative complement activity, hematology, tissue composition, vitamin concentrations and response to heat stress in juvenile golden shiner (Notemigonus crysoleucas). Aquaculture. 2004;242(1-4):553-69. [Link] [DOI:10.1016/j.aquaculture.2004.09.012]
Lin MF, Shiau SY. Dietary L-ascorbic acid affects growth, nonspecific immune responses and disease resistance in juvenile grouper, Epinephelus malabaricus. Aquaculture. 2005;244(1-4):215-21. [Link] [DOI:10.1016/j.aquaculture.2004.10.026]
Sandens K. Vitamin C in fish nutrition- a review. Fisk Dir Skr Ser Ernering. 1991;4(1):3-32. [Link]
Hardie LJ, Fletcher TC, Secombes CJ. The effect of dietary vitamin C on the immune response of the Atlantic salmon (Salmo salar L.). Aquaculture. 1991;95(3-4):201-14. [Link] [DOI:10.1016/0044-8486(91)90087-N]
Henrique MM, Gomes EF, Gouillou-Coustans MF, Oliva-Teles A, Davies SJ. Influence of supplementation of practical diets with vitamin C on growth and response to hypoxic stress of seabream, Sparus aurata. Aquaculture. 1998;161(1-4):415-26. [Link] [DOI:10.1016/S0044-8486(97)00289-5]
National Research Council, Division on Earth and Life Studies, Board on Agriculture and Natural Resources, Committee on the Nutrient Requirements of Fish and Shrimp. Nutrient requirements of fish and shrimp. Washington DC: National Academies Press; 2011. [Link]
Cabrita E, Robles V, Herráez P, editors. Methods in reproductive aquaculture: Marine and freshwater species. Boca Raton: CRC Press; 2009. [Link] [DOI:10.1201/9780849380549]
Waagbø R, Thorsen T, Sandnes K. Role of dietary ascorbic acid in vitellogenesis in rainbow trout (Salmo gairdneri). Aquaculture. 1989;80(3-4):301-14. [Link] [DOI:10.1016/0044-8486(89)90177-4]
Sheldrick EL, Flint AP. Post-translational processing of oxytocin-neurophysin prohormone in the ovine corpus luteum: Activity of peptidyl glycine α-amidating mono-oxygenase and concentrations of its cofactor, ascorbic acid. J Endocrinol. 1989;122(1):313-22. [Link] [DOI:10.1677/joe.0.1220313]
Halliwell B, Gutteridge JMC. Protection against oxidants in biological systems: The superoxide theory of oxygen toxicity. In: Halliwell B, Gutteridge JMC. Free radicals in biology and medicine. 5th Edition. Oxford: Oxford University Press; 2015. pp. 86-187. [Link]
Hornsby PJ, Harris SE, Aldern KA. The role of ascorbic acid in the function of the adrenal cortex: studies in adrenocortical cells in culture. Endocrinology. 1985;117(3):1264-71. [Link] [DOI:10.1210/endo-117-3-1264]
Carlson JC, Wu XM, Sawada M. Oxygen radicals and the control of ovarian corpus luteum function. Free Radic Biol Med. 1993;14(1):79-84. [Link] [DOI:10.1016/0891-5849(93)90511-R]