علوم و فنون شیلات

علوم و فنون شیلات

مطالعه میدانی اثربخشی واکسن استرپتوکوکوزیس/ لاکتوکوکوزیس و یرسینیوزیس بر ایمنی‌زایی و زنده‌مانی ماهی قزل آلای رنگین

نوع مقاله : پژوهشی اصیل

نویسندگان
1 گروه پژوهشی فرآورده های بیولوژیک دامی، سازمان جهاد دانشگاهی تهران، تهران، ایران.
2 گروه پژوهشی فرآورده‌های بیولوژیک دامی، سازمان جهاد دانشگاهی تهران، تهران، ایران.
3 گروه زیست شناسی سلولی مولکولی و میکروبیولوژی، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه اصفهان، اصفهان، ایران.
چکیده
در این مطالعه ایمنی­زایی واکسنچندظرفیتی استرپتوکوکوزیس/لاکتوکوکوزیس و یرسینیوزیس در ماهی قزل‌آلای رنگین‌کمان در مزرعه بررسی شد. 900 ماهی با میانگین 5±50 گرم به سه تیمار و سه تکرار) تیمار تزریقی، تیمار غوطه‌وری و گروه شاهد) تقسیم شدند. ماهیان به مدت 60 روز نگهداری و نمونه برداری در روزهای 30 و 60 انجام شد. سپس ماهیان به مدت 14 روز با سه باکتری استرپتوکوکوس اینیایی، لاکتوکوکوس گارویه و یرسینیا راکری به صورت جداگانه به چالش کشیده شدند. نمونه­برداری برای ارزیابی فعالیت لیزوزیم، کمپلمان، عیار آنتی­بادی و نرخ بقا صورت پذیرفت. نتایج حاکی از افزایش معنادار فعالیت لیزوزیم و کمپلمان سرم در روزهای 30 و 60 نمونه­برداری در گروه­های واکسینه نسبت به گروه شاهد افزایش بود (P<0.05). عیار آنتی­بادی علیه استرپتوکوکوس اینیایی، لاکتوکوکوس گارویه و یرسینیا راکری در روزهای 30 و 60 نمونه­برداری در گروه­های واکسینه افزایش معناداری را نسبت به گروه شاهد داشت (P <0.05).درصد بقای نسبی پس از 14 روز چالش با استرپتوکوکوس اینیایی، لاکتوکوکوس گارویه و یرسینیا راکری در گروه تزریقی به ترتیب (70، 60 و 6/76٪) بود که نسبت به گروه شاهد معنادار بود (P<0.05). همچنین درصد بقای نسبی در گروه غوطه­وری با استرپتوکوکوس اینیایی، لاکتوکوکوس گارویه و یرسینیا راکری به ترتیب (30، 6/36 و 3/53%) بودکه فقط در گروه غوطه­وری با استرپتوکوکوس اینیایی معنادار بود (P<0.05). به طور کلی می­توان نتیجه گرفت که استفاده از واکسن چندظرفیتی به روش تزریقی و غوطه­وری اثرات قابل توجهی بر ایمنی و میزان بقای قزل­الای رنگین کمان دارد. با این حال، روش تزریق موثرتر و مناسب­تر از روش غوطهوری است.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


1. Khanzadeh M, Beikzadeh B, Hoseinifar SH. The Effects of Laurencia caspica Algae Extract on Hemato-Immunological Parameters, Antioxidant Defense, and Resistance against Streptococcus agalactiae in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture Nutrition. 2023;2023.
2. Adel M, Gholaghaie M, Binaii M, Khanjany P, Awad E. Effect of dietary Achillea wilhelmsii extract on growth performance, and immune status of common carp (Cyprinus carpio). Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. 2016;7(6):1037–46.
3. Kibenge MJT, Iwamoto T, Wang Y, Morton A, Routledge R, Kibenge FSB. Discovery of variant infectious salmon anaemia virus (ISAV) of European genotype in British Columbia, Canada. Virology Journal. 2016;13:1–17.
4. Lulijwa R, Rupia EJ, Alfaro AC. Antibiotic use in aquaculture, policies and regulation, health and environmental risks: a review of the top 15 major producers. Reviews in Aquaculture. 2020;12(2):640–63.
5. Miccoli A, Manni M, Picchietti S, Scapigliati G. State-of-the-art vaccine research for aquaculture use: The case of three economically relevant fish species. Vaccines. 2021;9(2):140.
6. Costanzo V, Roviello GN. The Potential Role of Vaccines in Preventing Antimicrobial Resistance (AMR): An Update and Future Perspectives. Vaccines. 2023;11(2):333.
7. Erfanmanesh A, Beikzadeh B, Khanzadeh M. Efficacy of polyvalent vaccine on immune response and disease resistance against streptococcosis/lactococcosis and yersiniosis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Veterinary Research Communications. 2023;1–9.
8. Pereira WA, Mendonça CMN, Urquiza AV, Marteinsson VÞ, LeBlanc JG, Cotter PD, et al. Use of Probiotic Bacteria and Bacteriocins as an Alternative to Antibiotics in Aquaculture. Microorganisms. 2022;10(9):1705.
9. Mohamad A, Zamri-Saad M, Amal MNA, Al-Saari N, Monir MS, Chin YK, et al. Vaccine efficacy of a newly developed feed-based whole-cell polyvalent vaccine against vibriosis, streptococcosis and motile aeromonad septicemia in Asian Seabass, Lates calcarifer. Vaccines. 2021;9(4):368.
10. Varalakshmi B, Shanmugapriya A, Karpagam T, Suganya V, Firdous J, Arumugam VA, et al. Bacterial Fish Diseases and Treatment. In: Aquaculture Science and Engineering. Springer; 2022. p. 517–72.
11. Hosseini SA, Alishahi M. Efficacy of Injectable monovalent and bivalent Vaccines against Streptococcosis and yersiniosis in rainbow trout. Journal of Aquaculture Development. 2023;17(1):27–40.
12. Ross NW, Firth KJ, Wang A, Burka JF, Johnson SC. Changes in hydrolytic enzyme activities of naive Atlantic salmon Salmo salar skin mucus due to infection with the salmon louse Lepeophtheirus salmonis and cortisol implantation. Diseases of Aquatic Organisms. 2000;41(1):43–51.
13. Yano T. Assay of hemolytic complement activity. Techniques in Fish Immunology. 1992;131–41.
14. Skov J, Chettri JK, Jaafar RM, Kania PW, Dalsgaard I, Buchmann K. Effects of soluble immunostimulants on mucosal immune responses in rainbow trout immersion-vaccinated against Yersinia ruckeri. Aquaculture. 2018;492:237–46.
15. Cheng Z, Chu X, Wang S, Peng X, Li H. Six genes of ompA family shuffling for development of polyvalent vaccines against Vibrio alginolyticus and Edwardsiella tarda. Fish & Shellfish Immunology. 2018;75:308–15.
16. Mondal H, Thomas J. A review on the recent advances and application of vaccines against fish pathogens in aquaculture. Aquaculture International. 2022;1–30.
17. Bae J, Lee S, Moniruzzaman M, Hamidoghli A, Choi W, Lee S, et al. Evaluation of dietary fish meal analog with or without supplementation of natural feed additives as the substitute of fish meal in juvenile Japanese eel, Anguilla japonica. Frontiers in Marine Science. 2022;9:931940.
18. Harikrishnan R, Devi G, Van Doan H, Vijay S, Balasundaram C, Ringø E, et al. Dietary plant pigment on blood-digestive physiology, antioxidant-immune response, and inflammatory gene transcriptional regulation in spotted snakehead (Channa punctata) infected with Pseudomonas aeruginosa. Fish & Shellfish Immunology. 2022;120:716–36.
19. Li M, Zhang H, Sun J. A novel C1qDC (PoC1qDC) with a collagen domain in Paralichthys olivaceus mediates complement activation and against bacterial infection. Fish & Shellfish Immunology. 2023;132:108472.
20. Zhou S, Zheng X, Ding Y, Su L, Huang Q, Xiu Y. Immuno-Protective Efficiency of the Bivalent Inactivated Vaccine Against Vibrio scophthalmi and Aeromonas salmonicida Infections in Turbot (Scophthalmus maximus L.). Journal of Ocean University of China. 2023;22(4):1079–86.
21. Lan NGT, Salin KR, Longyant S, Senapin S, Dong HT. Systemic and mucosal antibody response of freshwater cultured Asian seabass (Lates calcarifer) to monovalent and bivalent vaccines against Streptococcus agalactiae and Streptococcus iniae. Fish & Shellfish Immunology. 2021;108:7–13.
22. Zhang J, Hu Y, Sun Q, Li X, Sun L. An inactivated bivalent vaccine effectively protects turbot (Scophthalmus maximus) against Vibrio anguillarum and Vibrio harveyi infection. Aquaculture. 2021;544:737158.
23. Radhakrishnan A, Vaseeharan B, Ramasamy P, Jeyachandran S. Oral vaccination for sustainable disease prevention in aquaculture—An encapsulation approach. Aquaculture International. 2023;31(2):867–91.
24. Secombes C.J, Wang T, Bird S, The interleukins of fish. Developmental & Comparative Immunology. 2011;35:1336–1345.
25. ZHANG, Zhihui, et al. Immune responses of zebrafish (Danio rerio) induced by bath-vaccination with a live attenuated Vibrio anguillarum vaccine candidate. Fish & Shellfish Immunology. 2012;33.1: 36-41.‏
26. Faghani T, Takami G. A, Kousha A, Faghani S. Surveying on alginic acid and anti-streptococcus vaccine effects on the growth performance, survival rate, hematological parameters in rainbow trout (Oncorhynchos mykiss). World Journal of Zoology. 2008;3.2: 54-58.‏
27. Hosseini S A, Alishahi M, rastiannasab A, mahmoudi R, gandomkar H. Efficacy of Injectable monovalent and bivalent Vaccines against Streptococcosis and yersiniosis in rainbow trout. Journal of Aquaculture Development. 2023;17 (1) :27-40.
28. Ghanei-Motlagh R, Gharibi D, Mohammadian T, Khosravi M, Mahmoudi E, Zarea M, etal, Feed supplementation with quorum quenching probiotics with anti-virulence potential improved innate immune responses, antioxidant capacity and disease resistance in Asian seabass (Lates calcarifer). Aquaculture. 2021; 535: 736345.